El primer ejemplo de AC en bacterias lácticas fue el del operón las (lactic acid synthesis) de Lc. lactis que codifica los enzimas fructosa-6-P quinasa (pfk), piruvato quinasa (pyk) y lactato deshidrogenasa (ldh). Un sitio cre situado en 5′ con respecto a la secuencia -35 del promotor esta involucrado en la AC (Luesink et al., 1998). Esto hace que en un mutante ccpA la tasa de transcripción y las actividades enzimáticas anteriores sean menores. Este fenómeno tiene un importante efecto en la fermentación de carbohidratos: puesto que estas actividades controlan en gran medida el flujo a través de la glucólisis, un mutante ccpA de Lc. lactis deja de realizar una fermentación homoláctica (prácticamente 100% de producción de ácido láctico a partir de la fermentación de carbohidratos) para pasar a mostrar una fermentación ácido mixta, con la consiguiente acumulación de otros compuestos como acetato y acetoína, formados a partir del piruvato. En S. thermophillus y L. casei el gen ldh es monocistrónico, pero también es activado por CcpA en presencia de glucosa (van den Bogaard et al., 2000; Viana, 2002). Un reciente análisis de la expresión de genes de la glucólisis en Lc. lactis utilizando DNA arrays ha demostrado que otros genes de la glucólisis como fba (FBP aldolasa) o tpi (triosa-P isomerasa) también están en cierta medida activados por glucosa (Even et al., 2001). En Lc. lactis los genes gapA (gliceraldehído-3P deshidrogenasa), eno (enolasa) ó pgi (glucosa-6P isomerasa), están activados por glucosa, aunque esta activación es debida a un sitio cre situado en el promotor sólo en el caso de pgi (Guedon et al., 2002). Un caso particular lo constituyen los genes pfk y pyk de L. casei. Estos genes están agrupados y transcritos conjuntamente. Su transcripción es inducida por el crecimiento sobre azúcares PTS, siendo la formación de P-Ser-HPr necesaria para este proceso (Viana et al., 2003). El regulador CcpA es capaz de unirse a la zona promotora de pfk-pyk en presencia de P-Ser-HPr, sin embargo esta unión tiene como efecto una represión de la transcripción de unas dos a tres veces.
Parece ser, por tanto, que es importante para la célula la modulación de la actividad glucolítica en presencia de un azúcar PTS. Por lo que diferentes microorganismos han desarrollado distintas estrategias, aunque todas basadas en el sistema PTS/CcpA, para modular el nivel de expresión de los genes glucolíticos dependiendo de la disponibilidad de carbohidratos fermentables. Existe una estrecha relación entre glucólisis y PTS: en primer lugar los azúcares PTS se cuentan entre los más rápidamente utilizables, ya que al entrar en la célula ya fosforilados son canálizados directamente a la glucólisis; en segundo lugar, parte del PEP metabolizado por la glucólisis ha de estar también disponible para el transporte y fosforilación de azúcares por el PTS. Esta íntima relación justifica la necesidad de ajustar los niveles de enzimas glucolíticos en presencia de azúcares PTS.
